CCS B 65
团体标准
T/CAZG 018—2022
动物园动物样本采集和保存操作指南
Performance guideline for collection and preservation of animal samples in zoos
2022 -12 -06 发布2023 -06 -01 实施
中国动物园协会发布
目次
前言 ................................................................................. II
1 范围 ............................................................................... 1
2 规范性引用文件 ..................................................................... 1
3 术语和定义 ......................................................................... 1
4 总则 ............................................................................... 1
4.1 安全性 ......................................................................... 1
4.2 有效性 ......................................................................... 2
4.3 保障动物福利 ................................................................... 2
5 通用要求 ........................................................................... 2
5.1 基本要求 ....................................................................... 2
5.2 操作步骤 ....................................................................... 2
6 样本的采集、保存和运送 ............................................................. 3
6.1 临床化验样本 ................................................................... 3
6.2 病理检查样本 ................................................................... 4
6.3 微生物检测样本 ................................................................. 5
6.4 遗传物质鉴定样本 ............................................................... 6
附录A（资料性） 器材与试剂 ........................................................... 8
附录B（资料性） 样本采集记录表 ...................................................... 10
附录C（资料性） 样本采集、保存和运送要点 ............................................ 11
I
T/CAZG 018—2022
前 言
本文件按照GB/T 1.1—2020《标准化工作导则 第1部分：标准化文件的结构和起草规则》的规定
起草。
本文件由中国动物园协会兽医工作委员会提出。
本文件由中国动物园协会管理工作委员会标准工作组归口。
本文件起草单位：北京动物园管理处、中国动物园协会、圈养野生动物技术北京市重点实验室、广
州动物园、南京市红山森林动物园管理处、成都动物园、重庆动物园、昆明动物园、太原动物园、福州
动物园。
本文件主要起草人：贾婷、王伟、张成林、于泽英、丛一蓬、赵素芬、由玉岩、刘燕、张丽霞、陈
蓉、杨玉钊、胡昕、孙冬婷、杨明海、王运盛、普天春、刘学锋、卢岩、尹彦强、植广林、王晓佳、周
俊、屈羽、曾菊英。
II
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动物园动物样本采集和保存操作指南
1 范围
本文件给出了动物园动物样本采集和保存的总体原则，提供了根据不同检测目的进行动物样本采集、
保存的操作方法建议，以及运送过程中的操作要点。
本文件适用于临床化验、病理检查、微生物检测和遗传物质鉴定为目的的动物样本采集和保存。
2 规范性引用文件
下列文件中的内容通过文中的规范性引用而构成本文件必不可少的条款。其中，注日期的引用文件，
仅该日期对应的版本适用于本文件；不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本
文件。
GB 18218 危险化学品重大危险源辨识
GB 19489 实验室 生物安全通用要求
GB 19781 医学实验室-安全要求
GB/T 36195 畜禽粪便无害化处理技术规范
CJJ/T 240 动物园术语标准
NY/T 541 动物疫病实验室检验采样方法
NY/T 561 动物炭疽诊断技术
SN/T 3592 实验室化学药品和样本废弃物处理的标准指南
WS/T 224 真空采血管及其添加剂
WS/T 225 临床化学检验血液标本的收集与处理
3 术语和定义
CJJ/T 240 界定的以及下列术语和定义适用于本文件。
3.1
样本 samples
取自动物体内外的，通过检测反映动物个体或群体有关状况的材料。
4 总则
4.1 安全性
4.1.1 人员要求
4.1.1.1 操作人员具备必要的专业技术知识，应熟练掌握样本采集工作程序、所用试剂特性以及器材
使用方法。
1
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4.1.1.2 操作人员应对所从事操作的潜在风险进行预判，并采取必要的安全防护措施，避免被动物咬
伤、抓伤等情况的发生。
4.1.1.3 每次样本采集工作不宜少于两人。
4.1.2 生物安全
4.1.2.1 动物样本应视为有感染性的材料，在样本采集、保存过程中采取必要的安全防护和应急措施，
防止人员感染和环境污染。
4.1.2.2 样本采集时产生的废弃样本及其它废弃物应按照GB 19781、GB 19489、GB/T 36195、WS/T 225、
SN/T 3592 的有关规定进行无害化处理。重复使用的器材，使用后应进行消毒灭菌处理。实验室等工作
场所进行消毒，保持洁净并经常通风换气。
4.1.2.3 死亡动物样本采集应由兽医或在其指导下进行操作；感染或疑似感染高致病性病原微生物时，
按NY/T 541 的规定执行；疑似感染炭疽的动物样本按NY/T 561 执行。
4.1.3 化学品安全防护
应建立危险化学品安全防护管理和培训制度，定期组织培训和演练。操作人员应能按照GB 18218
的要求辨识易燃、易爆、有毒或腐蚀性的试剂等危险化学品。
4.2 有效性和便利性
样本应能体现动物真实的生理或病理状态，能为疾病的预判、预防、诊断，了解疾病的发生和发展
规律，提高动物的福利提供具体研究对象。样本有明确的信息，采集操作过程符合要求。
宜在笼舍内设计安装不伤害动物的相关设施或器具，便于采集动物样本。
4.3 保障动物福利
动物样本采集的目的应满足饲养管理、疾病防治、科学研究的需求，充分考虑动物物种特点和个体
生理、心理状态。样本采集方式应保障动物福利，减轻动物应激，符合动物伦理要求。
a) 宜对饲养动物进行日常行为训练，以便于样本采集。拭子、尿液、血液和精液等样本采集宜与
动物训练相结合。
b) 宜通过动物行为观察，掌握动物生理活动规律，采集相关动物样本。
c) 在满足样本采集要求的前提下，宜优先选择经过行为训练的动物作为样本采集的对象。
d) 样本采集时宜选择合理的保定方式，减少动物因样本采集造成的应激和伤害。
5 通用要求
5.1 基本要求
5.1.1 样本采集环境应符合样本采集要求。
5.1.2 按照NY/T 541 的要求对直接接触样本的采样器材进行消毒。
5.1.3 样本编号应是每个样本唯一的编号，各单位在设计本单位样本编号时保持统一性和持续性。可
将多种信息用数字化的形式在编号中体现。
示例：年度－动物个体的单位编号—样本序号（2020-02-01）。
5.2 操作步骤
5.2.1 采集准备
2
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5.2.1.1 采样前应准备工具，并保证人员与动物安全。
5.2.1.2 根据采集样本的目的，选择正确的方法、器材及采样部位，并准备适于样本保存的容器、试
剂。器材与试剂见附录A。
5.2.1.3 样本采集前按要求安排运送准备工作。
5.2.2 处置和记录
5.2.2.1 应有相应的样本采集记录表。宜包括并不局限于以下内容：检测目的、样本来源单位、采集
日期及时间、样本编号、动物物种、动物个体的单位编号、呼名、性别、年龄、样本类型、动物体况及
医疗、保存方式、采样人姓名等。记录表样式见附录B。
5.2.2.2 在样本采集、处置后，宜采用不干胶专用样本标签贴于保存容器外壁，使用防水标记笔记录
样本编号。同时填写样本采集记录表。标签和记录表上的样本编号应保持一致。
5.2.2.3 样本采集、保存记录满足送检、留存备案等需求。
5.2.3 保存和运送
5.2.3.1 样本记录及装箱：将样本与采集记录表、样本标记等记录内容进行核对，核对无误后，宜将
样本分类装箱运送，以防止样本在运输过程中因震动、碰撞而导致污损，造成样本的污染，也要保证样
本不对环境和人员造成污染，样本箱宜有“请勿倒置”和“易碎物品”等明显标识。
5.2.3.2 根据样本的用途、检测指标和方法来选择运送条件和方式，并将所采集的样本，以最快最直
接的途径送往目的地。
5.2.3.3 根据不同的检测目的选择相应的保存条件。样本采集、保存和运送要求见附录C。
6 样本的采集、保存和运送
6.1 临床化验样本
6.1.1 血液样本
6.1.1.1 采集准备
采集前可根据采样动物体型大小、所需血量选择采血部位及相应的采血器材。采血器材的选择与使
用按照WS/T 224的规定进行。
6.1.1.2 采集处置
采集途径包括：静脉采血、动脉采血和末梢采血。
抗凝全血样本：采集血液样本缓慢地上下颠倒与抗凝剂混匀后静置；末梢全血样本采集后静置5 min，
重新混匀后运送至实验室。
血清样本：采集血液置于无抗凝剂管中，在室温下静置2 h～4 h（防止暴晒），待血液自然凝固，
析出血清，也可进行低速离心分离血清。
血浆样本：抗凝全血低速离心后分离血浆。
6.1.1.3 保存和运送
采血后立即运送样本进行血常规或临床化学检测。如不能立即检测，宜2 ℃～8 ℃保存，在化验规
定时间内完成运送。
6.1.2 粪便样本
3
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6.1.2.1 采集准备
宜明确个体信息。采用化学法做隐血试验的受试动物宜提前3 d禁食动物性食物（食肉动物除外）
和含过氧化物酶类的食物，并禁服铁剂或维生素C等，以免出现假阳性反应。
6.1.2.2 样本采集
应采集新鲜无污染的动物粪便样本，对粘液便、脓液便、血便，宜挑取粘液或脓血部分，水样便或
含絮状物的液状粪便的采集量为2 mL～5 mL；成形粪便至少取5 g，从表面、深处等多点位采集样本；
粪便量少于2 g，宜取全量。样本放于粪便采集盒、袋、管等容器内。采集肛拭子时，宜去掉过大的粪
便（＞0.5 cm），放入保存液。
6.1.2.3 保存和运送
粪便常规检测样本1 h内常温保存，如延迟检测1 h以上，宜2 ℃～8 ℃保存，且不超过24 h。寄生
虫检测样本2 ℃～8 ℃保存、运送时间不宜超过24 h。隐血试验样本宜0.5 h内送检，常温或2 ℃～8 ℃
运送。
6.1.3 尿液样本
6.1.3.1 采集准备
准备采集工具，清洁地面或相关设施和器具，不应给动物使用影响检测结果的药物和日粮。
6.1.3.2 样本采集
直接采集，或从地面吸取，或从相关设施、器具中采集，应采集新鲜无污染的尿液样本。
6.1.3.3 保存和运送
尿液样本宜在采集后2 h内完成检测；如不能完成检测，宜置于2 ℃～8 ℃条件下保存与运送，且
不宜超过6 h。
6.1.4 精液样本
6.1.4.1 采集准备
采精前对动物体表进行清洁。用1:1000 苯扎溴铵消毒尿道口后用无菌纱布拭干。阴茎龟头端的最
高点应高于包皮口。
6.1.4.2 样本采集
采用人工按摩或电刺激等方法采集精液，待阴茎勃起后用洁净的集精杯准备接取精液。分段射精动
物，宜分段采集，并选取富含精子部分的精液。
6.1.4.3 保存和运送
如需现场操作的精液样本宜分装，其他精液样本宜保存在37 ℃水浴中运送至实验室，具体时间由
各物种精子体外存活时间而定。如需留存精子，可参考不同物种相应操作程序冷冻精子与复苏，液氮保
存。
6.2 病理检查样本
6.2.1 采样原则
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先检查体表，再采集体内组织样本；先采集洁净组织样本，再采集污染组织样本；先采集明显病变
组织样本，再采集正常组织样本。
6.2.2 剖检样本
6.2.2.1 采样时间
宜在动物死亡6 h内进行内脏组织样本采集，如夏季气温高，采样时间宜进一步缩短。
6.2.2.2 采集处置
制备快速冰冻处理、OCT样本，每块组织单边长不小于0.5 cm，以样本与包埋剂完全接触为宜。制
备石蜡包埋样本，每块组织大小以1.5 cm×1.0 cm×0.5 cm为宜，单边长控制在2 cm以内。
对于发生病变的组织，采样宜覆盖正常组织和病变组织。采样时保持脏器的结构完整。宜增加采样
块数,不宜过度挤压组织或高温灼烧。
皮肤样本用手术刀或手术剪直接采集，样本大小以1 cm×1 cm 为宜。
6.2.2.3 保存和运送
10%福尔马林溶液固定的样本，常温保存；2.5%戊二醛固定的样本常温保存或2 ℃ ～ 8 ℃保存一
周。运送条件与保存条件相同。
6.2.3 活检样本
6.2.3.1 样本采集
选择适宜的采样方法，用专用的器材，在无菌条件下进行操作。采样部位宜涵盖病变严重部位，降
低采样对病变部位的损伤。
6.2.3.2 保存和运送
活检样本的保存和运送，宜按本文件6.2.2.3方法进行。
6.3 微生物检测样本
6.3.1 血液样本
6.3.1.1 样本采集
使用无菌采血针采集，并立即注入血培养瓶，采集过程应无菌操作。根据动物体况和检测需要确定
采样量，一般不少于1 mL～2 mL
6.3.1.2 保存和运送
不能立即送检的样本于4 ℃保存，并于2 h内培养检测。2 ℃～8 ℃运送。
6.3.2 粪便样本
6.3.2.1 样本采集
动物自然排便后，选取脓血、粘液部分不少于2 g，液体粪便取絮状物不少于2 mL，盛于灭菌容器
内或置于转运培养基内。
6.3.2.2 保存和运送
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粪便样本立即送检，室温保存不宜超过2 h，如不能立即检测，应放入转运培养基中，且不超过24 h。
2 ℃～8 ℃运送。
6.3.3 脓液样本
6.3.3.1 样本采集
封闭性脓肿，用医用酒精棉消毒采样部位，用无菌注射器抽取脓液密封保存。
开放性脓疮，用无菌生理盐水冲洗疮面，用棉拭子取疮口深处的分泌物后放入灭菌试管。
6.3.3.2 保存和运送
不能立即送检的样本4 ℃保存，24 h内检测。2 ℃～8 ℃运送。
6.3.4 组织样本
6.3.4.1 采集处置
组织表面灭菌后用无菌刀片划开，用无菌接种针或环插入深处采样。采集样本体积适宜实验室无菌
采样接种。脑组织样本应立即采集。
6.3.4.2 保存和运送
不能立即送检的组织样本放入无菌袋4 ℃保存，24 h内检测。2 ℃～8 ℃运送。
6.3.5 皮肤、毛发样本
6.3.5.1 采集准备
采集前不宜使用抗生素或类固醇类药物，如不可停药，宜推迟采样或详细记录用药情况。
6.3.5.2 样本采集
用于真菌或寄生虫检测的皮肤样本，在消毒并暴露皮肤后，用酒精灯消毒稍钝的刀片，与皮肤呈45°
角，顺着被毛生长方向轻刮，直至有轻微渗血为止；采样完毕后用碘酒处理采样部位。将刮取的物质转
移至载玻片进行镜检或培养。
用于真菌或寄生虫检测的毛发样本，顺毛发生长的方向拔起，包括发根。
6.3.5.3 保存和运送
对不能立即检测的样本，2 ℃～8 ℃保存运送。
6.4 遗传物质鉴定样本
6.4.1 DNA 测试样本
6.4.1.1 采集准备
与样本直接接触的采样器材提前高压灭菌或使用前用酒精擦拭后再火焰消毒。
6.4.1.2 样本采集
DNA测试样本宜无菌操作，防止污染。根据样本类型不同，采集方法如下：
6
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a) 血液样本：按本文件6.1.1.2，抗凝剂宜使用EDTA-Na2 或枸椽酸钠。根据实验目的区分采血
量，以全血样本提取，鸟类采集宜不少于30 μL，其他动物宜不少于50μL；以血清或血浆样
本提取，应增加采血量。
b) 组织样本：快速分割成小块，放入采样管。根据实验目设定组织样本采样量，宜不少于0.3g。
c) 拭子样本：主要为动物的咽拭子和肛拭子。采集后拭子头部放入含有抗生素的等渗 PBS 缓冲
液（0.01 mol/L，pH = 7.4）中。
d) 毛发样本：取指定部位的带毛囊的毛发，鸟类翼下次级飞羽不少于2 根，其他动物毛发不少
于20 根。每个体取毛发样本后，应更换手套减少样本污染。
6.4.1.3 保存和运送
24 h 内送检的样本保存于4 ℃，对送检时间超过24 h 的样本，液氮或干冰运送。
6.4.2 RNA 测试样本
6.4.2.1 采集准备
与样本直接接触的采样器材提前高压灭菌或使用前用酒精擦拭后再火焰消毒。选择灭菌、无RNA酶
的采样管。
6.4.2.2 样本采集
RNA测试样本宜无菌操作，防止污染。根据样本类型不同，采集方法如下：
a) 全血样本：采集新鲜血液，根据实验目的选择抗凝剂并区分采血量，宜不少于300 μL。
b) 组织样本：按本文件6.4.1.2.b。
6.4.2.3 保存和运送
样本宜4 ℃保存，24 h内提取RNA。组织样本于液氮或超低温冰箱保存，可加入成品RNA保存液。血
液样本4 ℃运送；组织样本液氮或干冰运送。
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A
A
附录A
（资料性）
器材与试剂
A.1 器材
A.1.1 粪便采集盒： 容积15 mL、20 mL、40 mL，内附棉签或采集匙。
A.1.2 尿液收集杯：容积20 mL、40 mL、60 mL，螺旋盖。
A.1.3 尿液离心管： 容积5 mL、7 mL，螺旋盖，尖底。
A.1.4 集精杯：不锈钢内胆或玻璃内胆保温。
A.1.5 采样杯：容积100 mL、200 mL。
A.1.6 血培养瓶：标准需氧瓶、标准厌氧瓶、树脂需氧瓶、树脂厌氧瓶、儿童树脂瓶、含溶血素厌氧
瓶、含溶血素分支杆菌/真菌瓶，在2 ℃～25 ℃环境中贮存。
A.1.7 灭菌袋（管）。
A.1.8 拭子采集管、无菌拭子，保存液。
A.1.9 无菌试管、试管架、无菌吸管。
A.1.10 量杯：量程10 mL～200 mL。
A.1.11 移液器：量程100 μL～1000 μL，增量10 μL。
A.1.12 接种针、接种环。
A.1.13 酒精灯。
A.1.14 离心管。
A.1.15 离心机。
A.1.16 平皿。
A.1.17 一次性使用末梢血采血管：具备量程10 μL、20 μL。
A.1.18 一次性使用无菌采血针：全长40 mm，不锈钢材质，单独灭菌包装。
A.1.19 无菌注射器：具备量程1 mL～50 mL，环氧乙烷消毒。
A.1.20 手术刀、手术剪、镊子、止血钳、弯盘。
A.1.21 无菌棉签、无菌棉球、无菌纱布。
A.1.22 PE手套、一次性薄膜手套、封口膜。
A.1.23 保温箱、保温瓶、冰袋。
A.1.24 转运箱：容积30 L、45 L、60 L等。
A.1.25 护目镜。
A.1.26 听诊器。
A.1.27 穿刺针。
A.2 试剂
A.2.1 生理盐水。
A.2.2 磷酸盐平衡生理盐水：0.01 mol/L pH 9.0磷酸盐-生理盐水缓冲液，250 g/瓶。
A.2.3 DNA保存液：4 ℃保存。
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A.2.4 RNA保存液：4 ℃保存。
A.2.5 精液保存液：保护剂或自主配方保护剂，以糖类、盐类、抗生素、抗氧化剂及其他保护剂为主
要成分，-20 ℃保存。
A.2.6 转运培养基：4 ℃保存。
A.2.7 血培养基：含5%脱纤维羊血的营养琼脂培养基。
A.2.8 无水乙醇：分析纯。
A.2.9 医用酒精。
A.2.10 福尔马林：10%中性福尔马林固定液。
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附录B
（资料性）
样本采集记录表
表 B.1 给出了样本采集记录表的样式。
表B.1 样本采集记录表
样本来源单位名称：
序号
采集日期及
时间
样本编号 动物物种 动物个体单位编号 呼名 性别 年龄
动物体况及医
疗
采样部位 样本类型 采样量 样本描述 保存方式 采样人 备注
1
2
3
4
注1：采集日期及时间：明确采样的年、月、日、时间。
注2：动物个体单位编号：单位对该动物的统一编号。
注3：动物体况及医疗：动物的健康状况、医疗史、用药情况、病理剖检样本采集应注明死亡时间、剖检时间等。
注4：采样量：固体样本标注重量（粪便样本）或体积（组织样本），液体样本标注体积，拭子样本标注支数，毛发样本标注管数。
注5：样本描述：临床样本的表观、脏器病变情况及其他性状。
注6：保存方式：记录采样后进行的各种操作，如样本处理方式，保存媒介的使用，转运条件等。
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T/CAZG 018—2022
B
B
附录C
（资料性）
样本采集、保存和运送要点
表 C.1 给出了样本采集、保存和运送的要求。
表C.1 样本采集、保存和运送要点
样本 检测内容 采集准备 采样要求 保存 运送
抗凝全血 血常规
采血器材、乙二胺四
乙酸抗凝剂
血液样本缓慢上下颠倒与抗凝剂混匀
后静置
如不能立即检测，常温或2 ℃～8 ℃保存，
宜4 h内完成检测
血清 临床化学 采血器材 常温或2 ℃～8 ℃运送
全血样本自然凝固，静置或低速离心
后分离血清
血浆 临床化学 采血器材、抗凝剂
缓慢上下颠倒与抗凝剂混匀后低速离
心，分离血浆
粪便 粪便常规
粪便采集盒、袋、管
等容器
新鲜无污染，个体明确
1 h内常温保存，如延迟检测1 h以上，宜
2 ℃～8 ℃保存，且不超过24 h
2 ℃～8 ℃运送，不宜超过24 h
粪便 寄生虫检测 新鲜无污染，个体明确 2 ℃～8 ℃保存，不宜超过24 h 2 ℃～8 ℃运送，不宜超过24 h
粪便 隐血检测
提前3 d禁食含过氧化物酶类的食物；
禁食动物性食物（食肉动物除外）；
禁服铁剂或维生素C
常温或2 ℃～8 ℃保存
宜0.5 h内送检，常温或2 ℃～
8 ℃运送
尿液 尿常规
清洁地面，采尿管，
吸管
不使用影响检验结果的药物和日粮
宜2 h内完成检测；如不能完成检测，宜置于
2 ℃～8 ℃不超过6 h
2 ℃～8 ℃运送
精液 临床化学
1:1000 苯扎溴铵消
毒尿道口后无菌纱布
拭干
分段射精动物，选取富含精子部分的
精液分段采集
制成冷冻精液
液氮保存
37 ℃运送或制成冷冻精液液氮
运送
组织 病理检查 采样器材、固定液
不宜过度挤压组织或高温灼烧；死亡
动物宜在6 h内进行内脏组织采集，如
10%福尔马林溶液保存的组织，常温保存
2.5%戊二醛固定的样本常温保存或2 ℃ ～
10%福尔马林溶液保存的组织，
常温运送；2.5%戊二醛2 ℃～
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T/CAZG 018—2022
夏季气温高，采样时间宜进一步缩短 8 ℃保存一周。 8 ℃运送或常温运送
血液 细菌检测
无菌采血针、血培养
瓶
采集过程中应无菌操作，直接接入血
培养瓶
不能立即接入血培养瓶样本于4 ℃保存，并
于24h内送检培养
2 ℃～8 ℃运送
粪便 细菌检测
灭菌容器内或置于转
运培养基
新鲜无污染，个体明确
立即送检，室温保存不宜超过2 h。如不能立
即检测，应放入转运培养基，且不超过24 h
2 ℃～8 ℃运送
脓液 细菌检测
医用酒精、无菌注射
器、无菌生理盐水、
灭菌试管
新鲜无污染，个体明确
不能立即检测的样本，4 ℃运送或保存，24 h
内检测
2 ℃～8 ℃运送
组织 细菌检测
无菌刀片、无菌接种
针或环
新鲜无污染，个体明确；脑组织应立
即采集
不能立即接种的，常温或4 ℃保存 2 ℃～8 ℃运送
皮肤
真菌或寄生虫
检测
无菌刀片 选择病变部位 对不能立即检测的样本，2 ℃～8 ℃保存 2 ℃～8 ℃运送
毛发
真菌或寄生虫
检测
无菌采样器材 选择断裂、粗短的病变毛发 对不能立即检测的样本，2 ℃～8 ℃保存 2 ℃～8 ℃运送
血液 DNA鉴定
无菌采样器材、医用
酒精、采样管
宜无菌操作，防止污染
24 h内送检的样本保存于4 ℃，对送检时间
超过24 h的样本，冷冻处理
24 h内送检的样本2 ℃～8 ℃
运送；送检时间超过24 h的样
本，液氮或干冰运送
组织 DNA鉴定
拭子 DNA鉴定
毛发 DNA鉴定
血液 RNA鉴定 无菌采样器材、灭菌、
无RNA酶的采样管
宜无菌操作，防止污染
4 ℃保存，保持新鲜 4 ℃运送
组织 RNA鉴定 液氮或超低温冰箱保存 液氮或干冰运送
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